Поражения легких при лимфопролиферативных заболеваниях
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-34-4-522-532
Аннотация
Первичные лимфомы классифицируются в соответствии с общей системой классификации Всемирной организации здравоохранения. Несмотря на то, что более чем у 50 % пациентов с узловыми лимфомами отмечается поражение легких, первичные легочные лимфомы составляют < 0,5 % всех первичных новообразований легких. Кроме того, наиболее распространенная первичная лимфома легких – неходжкинская В-клеточная лимфома маргинальной зоны (MALT-лимфома) – составляет < 10 % экстранодальных лимфом. Лимфомы Ходжкина (ЛХ) лишь в редких случаях считаются первичными лимфомами легких, даже если легкие являются основным органом поражения. Более того, чаще всего при первичной легочной MALT-лимфоме по данным углубленного обследования выявляются другие экстранодальные участки (например, желудок, толстая кишка, щитовидная железа, костный мозг), которые могут быть идентифицированы как места субклинической клональной лимфоидной пролиферации. Вторичное поражение легких при лимфомах обнаруживается в 50 % случаев и встречается чаще, чем первичная легочная лимфома. Однако морфологически определить различие между первичной легочной лимфомой и вторичным поражением легких при лимфопролиферативных заболеваниях (ЛПЗ) сложно. Целью обзора явилось демонстрация данных о клинических и диагностических особенностях первичных и вторичных поражений легких при злокачественных ЛПЗ. Заключение. Поражения легких при ЛПЗ могут быть первичными и вторичными. Первичные поражения легких и плевры при ЛПЗ встречаются редко, в то время как лимфомы, вторично поражающие легкие, при аутопсии выявляются в 20 % случаев. В большинстве случаев диагноз основывается на результатах световой микроскопии, иммуно-гистохимических и молекулярных исследований.
Об авторах
В. В. Гайнитдинова
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия
Конфликт интересов:
Россия
Гайнитдинова Вилия Вилевна – д. м. н., доцент, профессор кафедры пульмонологии Института клинической медицины имени Н.В. Склифосовского.
119991, Москва, ул. Трубецкая, 8, стр. 2
Тел.: (499) 248-53-83
Конфликт интересов:
Нет
С. Н. Авдеев
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия
Конфликт интересов:
Россия
Авдеев Сергей Николаевич – д. м. н., профессор, академик Российской академии наук, заведующий кафедрой пульмонологии Института клинической медицины имени Н.В. Склифосовского ФГАОУ ВО «ПМГМУ им. И.М. Сеченова» МЗ РФ (Сеченовский Университет), главный внештатный специалист-пульмонолог Министерства здравоохранения Российской Федерации; директор Национального медицинского исследовательского центра по профилю «Пульмонология».
119991, Москва, ул. Трубецкая, 8, стр. 2
Тел.: (499) 248-53-83
Конфликт интересов:
Нет
Список литературы
1. Swerdlow S., Campo E., Harris N. et al. eds. WHO classification of tumours of haematopoietic and lymphoid tissues. 4th Edn. Lyon: International Agency for Research on Cancer (IARC); 2017. Vol. 2. Available at: https://publications.iarc.who.int/Book-And-Report-Series/Who-Classification-Of-Tumours/WHO-Classification-Of-Tumours-Of-Haematopoietic-And-Lymphoid-Tissues-2017
2. Medeiros L.J. Ioachim’s lymph node pathology. 5th Edn. Philadelphia: Wolters Kluwer; 2021. Available at: https://www.lww.co.uk/9781451193572/ioachims-lymph-node-pathology/
3. ROHS. Российские клинические рекомендации по диагностике и лечению лимфопролиферативных заболеваний. 2018. Доступно на: https://rusoncohem.ru/klinrec/klin-rekomendatsii-limfoproliferativnykh-zabolevaniy/?ysclid=lxt22itbh820547574
4. Okada Y., Ito M., Nagaishi C. Anatomical study of the pulmonary lymphatics. Lymphology. 1979; 12 (3): 118–124. Available at: https://journals.librarypublishing.arizona.edu/lymph/article/id/4256/
5. Le Pimpec Barthes F., Riquet M., Hartl D. et al. Cervical venous anastomoses of pulmonary lymphatic vessels. Surg. Radiol. Anat. 1997; 19 (1): 53–55. DOI: 10.1007/BF01627737.
6. Riquet M., Le Pimpec Barthes F., Souilamas R., Hidden G. Thoracic duct tributaries from intrathoracic organs. Ann. Thorac. Surg. 2002; 73 (3): 892–898. DOI: 10.1016/s0003-4975(01)03361-6.
7. Goldblum J.R., Folpe A.L., Enzinger F.M. et al. Tumors and malformations of lymphatic vessels. In: Goldblum J.R., ed. Enzinger and weiss’s soft tissue tumors. Amsterdam: Elsevier; 2020: 817–836. Available at: https://www.clinicalkey.com/#!/content/book/3-s2.0-B9780323610964000239
8. Bienenstock J., Johnston N. A morphologic study of rabbit bronchial lymphoid aggregates and lymphoepithelium. Lab. Invest. 1976; 35 (4): 343–348. Available at: https://europepmc.org/article/med/979165
9. Oshiro Y., Kusumoto M., Moriyama N. et al. Intrapulmonary lymph nodes: thin-section CT features of 19 nodules. J. Comput Assist. Tomogr. 2002; 26 (4): 553–557. DOI: 10.1097/00004728-200207000-00014.
10. Shaham D., Vazquez M., Bogot N.R. et al. CT features of intrapulmonary lymph nodes confirmed by cytology. Clin. Imaging. 2010; 34 (3): 185–190. DOI: 10.1016/j.clinimag.2009.05.005.
11. Labarca G., Sierra-Ruiz M., Kheir F. et al. Diagnostic accuracy of endobronchial ultrasound transbronchial needle aspiration in lymphoma: a systematic review and meta-analysis. Ann. Am. Thorac. Soc. 2019; 16 (11): 1432–1439. DOI: 10.1513/AnnalsATS.201902-175OC.
12. Bianchi R., Dubini A., Asioli S. et al. Transbronchial cryobiopsy: an effective tool in the diagnosis of lymphoproliferative disorders of the lung. ERJ Open Res. 2020; 6 (3): 00260–2019. DOI: 10.1183/23120541.00260-2019.
13. Yell M., Rosado F.G. Pulmonary nodular lymphoid hyperplasia. Arch. Pathol. Lab. Med. 2019; 143 (9): 1149–1153. DOI: 10.5858/arpa.2018-0188-RS.
14. Ravaglia C., Poletti V. Bronchiolitis and bronchiolar disorders. Semin. Respir. Crit. Care Med. 2020; 41 (2): 311–332. DOI: 10.1055/s-0039-3402728.
15. Yousem S.A., Colby T.V., Carrington C.B. Follicular bronchitis/ bronchiolitis. Hum. Pathol. 1985; 16 (7): 700–706. DOI: 10.1016/s0046-8177(85)80155-6.
16. Colby T.V., Yousem S.A. Pulmonary lymphoid neoplasms. Semin. Diagn. Pathol. 1985; 2 (3): 183–196. Available at: https://mayoclinic.elsevierpure.com/en/publications/pulmonary-lymphoid-neoplasms
17. Ferraro P., Trastek V.F., Adlakha H. et al. Primary non-Hodgkin’s lymphoma of the lung. Ann. Thorac. Surg. 2000; 69 (4): 993–997. DOI: 10.1016/s0003-4975(99)01535-0.
18. Graham B.B., Mathisen D.J., Mark E.J., Takvorian R.W. Primary pulmonary lymphoma. Ann. Thorac. Surg. 2005; 80 (4): 1248–1253. DOI: 10.1016/j.athoracsur.2005.04.014.
19. Sanguedolce F., Zanelli M., Zizzo M. et al. Primary pulmonary B-cell lymphoma: a review and update. Cancers (Basel). 2021; 13 (3): 415. DOI: 10.3390/cancers13030415.
20. He H., Tan F., Xue Q. et al. Clinicopathological characteristics and prognostic factors of primary pulmonary lymphoma. J. Thorac. Dis. 2021; 13 (2): 1106–1117. DOI: 10.21037/jtd-20-3159.
21. Bi W., Zhao S., Wu C. et al. Pulmonary mucosa-associated lymphoid tissue lymphoma: CT findings and pathological basis. J. Surg. Oncol. 2021; 123 (5): 1336–1344. DOI: 10.1002/jso.26403.
22. Poletti V., Romagna M., Gasponi A. et al. Bronchoalveolar lavage in the diagnosis of low-grade MALT type, B-cell lymphoma in the lung. Monaldi Arch. Chest Dis. 1995; 50 (3): 191–194. Available at: https://www.researchgate.net/publication/15534646_Bronchoalveolar_lavage_in_the_diagnosis_of_low-grade_MALT_type_B-cell_lymphoma_in_the_lung
23. Zinzani P.L., Pellegrini C., Gandolfi L. et al. Extranodal marginal zone B-cell lymphoma of the lung: experience with fludarabine and mitoxantrone-containing regimens. Hematol. Oncol. 2013; 31 (4): 183–188. DOI: 10.1002/hon.2039.
24. Pileri S.A., Tripodo C., Melle F. et al. Predictive and prognostic molecular factors in diffuse large B cell lymphomas. Cells. 2021; 10 (3): 675. DOI: 10.3390/cells10030675.
25. Ali A., Goy A., Dunleavy K. CAR T-cell therapy in highly-aggressive B-cell lymphoma: emerging biological and clinical insights tracking. Blood. 2022; 140 (13): 1461–1469. DOI: 10.1182/blood.2022016226.
26. Katzenstein A.L., Doxtader E., Narendra S. Lymphomatoid granulomatosis: insights gained over 4 decades. Am. J. Surg. Pathol. 2010; 34 (12): e35–48. DOI: 10.1097/PAS.0b013e3181fd8781.
27. Koss M.N., Hochholzer L., Langloss J.M. et al. Lymphomatoid granulomatosis: a clinicopathologic study of 42 patients. Pathology. 1986; 18 (3): 283–288. DOI: 10.3109/00313028609059478.
28. Koss M.N., Hochholzer L., Moran C.A., Frizzera G. Pulmonary plasmacytomas: a clinicopathologic and immunohistochemical study of five cases. Ann. Diagn. Pathol. 1998; 2 (1): 1–11. DOI: 10.1016/s1092-9134(98)80029-4.
29. Palladini G., Merlini G. How I treat AL amyloidosis. Blood. 2022; 139 (19): 2918–2939. DOI: 10.1182/blood.2020008737.
30. Oluwasanjo A., Karten S., Johnson W. et al. Peripheral T-cell lymphoma, not otherwise specified (PTCL-NOS). Cancer Treat. Res. 2019; 176: 83–98. DOI: 10.1007/978-3-319-99716-2_4.
31. Zhang X., Zhou J., Han X. et al. Update on the classification of and diagnostic approaches to mature T-cell lymphomas. Arch. Pathol. Lab. Med. 2022; 146 (8): 947–952. DOI: 10.5858/arpa.2021-0143-RA.
32. Radin A.I. Primary pulmonary Hodgkin’s disease. Cancer. 1990; 65 (3): 550–563. DOI: 10.1002/1097-0142(19900201)65:3%3C550::AID-CNCR2820650328%3E3.0.CO;2-W.
33. Yousem S.A., Weiss L.M., Colby T.V. Primary pulmonary Hodgkin’s disease: a clinicopathologic study of 15 cases. Cancer. 1986; 57 (6): 1217–1224. DOI: 10.1002/1097-0142(19860315)57:6<1217::aid-cncr2820570626>3.0.co;2-n.
34. Chetty R., Slavin J.L., O’Leary J.J. et al. Primary Hodgkin’s disease of the lung. Pathology. 1995; 27 (2): 111–114. DOI: 10.1080/00313029500169672.
35. Harada T., Iwasaki H., Muta T. et al. Outcomes of methotrexateassociated lymphoproliferative disorders in rheumatoid arthritis patients treated with disease-modifying anti-rheumatic drugs. Br. J. Haematol. 2021; 194 (1): 101–110. DOI: 10.1111/bjh.17456.
36. Sekiguchi Y., Iizuki H., Takizawa H. et al. Methotrexateassociated Hodgkin lymphoma in a patient with rheumatoid arthritis successfully treated with brentuximab vedotin in combination with doxorubicin, vinblastine, and dacarbazine (BV+AVD). Intern. Med. 2020; 59 (17): 2165–2171. DOI: 10.2169/internalmedicine.4417-20.
37. Hu Z., Pan Z., Chen W. et al. Primary pulmonary lymphoma: a clinicopathological study of 70 cases. Cancers (Basel). 2021; 13 (4): 878. DOI: 10.3390/cancers13040878.
38. Calvani J., Gerard L., Fadlallah J. et al. A comprehensive clinicopathologic and molecular study of 19 primary effusion lymphomas in HIV-infected patients. Am. J. Surg. Pathol. 2022; 46 (3): 353–362. DOI: 10.1097/PAS.0000000000001813.
39. Dinmohamed A.G., Visser O., Doorduijn J.K., Lugtenburg P.J. Treatment and survival of patients with primary effusion lymphoma in the Netherlands: a population-based analysis, 2002–2015. Hemasphere. 2018; 2 (5): e143. DOI: 10.1097/HS9.0000000000000143.
40. Nakatsuka S., Yao M., Hoshida Y. et al. Pyothorax-associated lymphoma: a review of 106 cases. J. Clin. Oncol. 2002; 20 (20): 4255–4260. DOI: 10.1200/JCO.2002.09.021.
41. Petitjean B., Jardin F., Joly B. et al. Pyothorax-associated lymphoma: a peculiar clinicopathologic entity derived from B cells at late stage of differentiation and with occasional aberrant dual B- and T-cell phenotype. Am. J. Surg. Pathol. 2002; 26 (6): 724–732. DOI: 10.1097/00000478-200206000-00005.
42. Ito K., Kubota K., Morooka M. et al. F-18 FDG PET/CT findings in two patients with pyothorax-associated lymphoma. Clin. Nucl. Med. 2010; 35 (10): 802–805. DOI: 10.1097/RLU.0b013e3181ef09df.
43. Ueda T., Andreas C., Itami J. et al. Pyothorax-associated lymphoma: imaging findings. AJR Am. J. Roentgenol. 2010; 194 (1): 76–84. DOI: 10.2214/AJR.09.2603.
44. Trisolini R., Lazzari Agli L., Poletti V. Bronchiolocentric pulmonary involvement due to chronic lymphocytic leukemia. Haematologica. 2000; 85 (10): 1097. Available at: https://haematologica.org/article/view/1839
45. Poletti V., Colella S., Piciucchi S. et al. Pulmonary involvement in haematological disorders and bone marrow transplant recipients. In: Wuyts W., Cottin V., Spagnolo P., Wells A.U., eds. Pulmonary manifestations of systemic diseases. Eur. Respir. Monograph. 2019; 333–358. Available at: https://www.ers-education.org/lr/show-details/?idP=222756
46. Aguilera N., Gru A.A. Reexamining post-transplant lymphoproliferative disorders: newly recognized and enigmatic types. Semin. Diagn. Pathol. 2018; 35 (4): 236–246. DOI: 10.1053/j.semdp.2018.02.001.
47. Romero S., Montoro J., Guinot M. et al. Post-transplant lymphoproliferative disorders after solid organ and hematopoietic stem cell transplantation. Leuk. Lymphoma. 2019; 60 (1): 142–150. DOI: 10.1080/10428194.2018.1474462.
48. Ababneh E., Saad A.M., Crane G.M. The role of EBV in haematolymphoid proliferations: emerging concepts relevant to diagnosis and treatment. Histopathology. 2021; 79 (4): 451–464. DOI: 10.1111/his.14379.
49. Feuillet S., Meignin V., Briére J. et al. Endobronchial Epstein-Barr virus associated post-transplant lymphoproliferative disorder in hematopoietic stem cell transplantation. Clin. Med. Case Rep. 2009; 2: 11–15. DOI: 10.4137/ccrep.s2084.
Дополнительные файлы
Рецензия
Для цитирования:
Гайнитдинова В.В., Авдеев С.Н. Поражения легких при лимфопролиферативных заболеваниях. Пульмонология. 2024;34(4):522-532. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-34-4-522-532
For citation:
Gainitdinova V.V., Avdeev S.N. Lung lesions in lymphoproliferative diseases. PULMONOLOGIYA. 2024;34(4):522-532. (In Russ.) https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-34-4-522-532
Просмотров:
1321
Послать статью по эл. почте 