Действие местного иммунокорректора со свойствами вакцины НРС 19 на концентрацию перекиси водорода и активность миелопероксидазы в смывах из полости носа у больных с хроническим бронхитом
Аннотация
Двадцать восемь взрослых больных обоего пола, страдающие хроническим бронхитом, приняли участие в открытом исследовании, посвященном изучению эффекта применения местного иммуномодулирующего препарата со свойствами вакцины ИРС 19 на число полиморфноядерных лейкоцитов (ПМЯЛ), концентрацию Н202 и активность миелопероксидазы (МЛП) в смывах из полости носа. Число ПМЯЛ, выделявшихся из полости носа, увеличилось после двух месяцев применения ИРС 19 с 4460±3960 до 10 490±10 950 клеток на мл (р<0,02). Этот эффект сопровождался повышением активности МЛП и концентрации Н202, соответственно, в 2,6 и 1,4 раза (р<0,001). Поскольку система ПМЯЛ и МЛП – Н202 – CIˉ находится на переднем крае защиты от проникновения патогенных микроорганизмов, можно предположить, что упомянутые выше изменения могут представлять собой один из механизмов, приводящих к повышению антибактериального иммунитета в области дыхательных путей в ответ на лечение препаратом ИРС 19.
Об авторах
D. Nowak
Медицинский институт Лодзинского университета
Польша
Польша
отделение пульмонологии и аллергологии
M. Prozynski
Лаборатория Института туберкулеза и легочных болезней по изучению бронхов
Россия
Россия
T. Pietras
Медицинский институт Лодзинского университета
Польша
Польша
отделение пульмонологии и аллергологии
R. StoIarek
Медицинский институт Лодзинского университета
Польша
Польша
отделение пульмонологии и аллергологии
P. Mazerant
Медицинский институт Лодзинского университета
Польша
Польша
студент
г. Лодзь
M. Leder
Медицинский институт Лодзинского университета
Польша
Польша
студент
г. Лодзь
Список литературы
1. Abdou М.А., Hanna К.М., El Attar S. et al. Influence of a bacterial extract, broncho-vaxom, on clinical and immunological parameters in patients with intrinsic asthma. Int. J. Immunotherapy 1993; 9: 127-133.
2. Andrews P.C., Krinsky N. A kinetic analysis of the interaction of human myeloperoxidase with hydrogen peroxide, chloride ions, and protons. J. Biol. Chem. 1982; 257: 13240-13245.
3. American Thoracic Society. Standardization of spirometry 1987 update. Am. Rev. Respir. Dis. 1987; 136: 1285-1298.
4. Babior B.M. Oxidants from phagocytes agents of defense and destruction. Blood 1984; 64: 959-966.
5. Bandekar J.R., Castagna R., Sultzer B.M. Roles of protein kinase С and G proteins in activation of murine resting В lymphocytes by endotoxin-associated protein. Infect, and Immun. 1992; 60: 231-236.
6. Borregard N., Lollike K., Kieldsen L., Sengelov H. et al. Human neutrophil granules and secretory vesicles. Eur. J. Heamatol. 1993; 51: 187-198.
7. Bradley P.P., Christensen R.D., Rothstein C. Cellular and extracellular myeloperoxidase in pyrogenic inflammation. Blood 1982; 60: 618-622.
8. Cantin A.M., Fells G.A., Hubbard R.C., Crystal R.C. Antioxidant macromolecules in the epithelial lining fluid of the normal human lower respiratory tract. J. Clin. Invest. 1990; 86: 962-971.
9. Clot J., Andry M. Immunostimulation induite par in lysat bactérien lyophilise. Etude in vitro des responses spécifiques et non spécifiques. Med. Hyg. 1980; 38: 2776-2782.
10. Cohen M.S., Mao J., Rasmussen G.T. et al. Interaction of lactoferrin and lipopolysaccharide (LPS): Effects on the antioxidant property of lactoferrin and the ability of LPS to prime human neutrophils for enhanced superoxide formation. J. Infect. Dis. 1992; 166: 1375-1378.
11. Follin P., Danlgren C. Phagocytosis by lipopolysaccharide primed human neutrophils is associated with increased extracellular release of reactive oxygen metabolites. Inflammation 1992; 16:83-91.
12. Goldblum S.E., Wu K.M., Jay M. Lung myeloperoxidase as a measure of pulmonary leukostasis in rabbits. J. Appl. Physiol. 1985; 59: 1978-1985.
13. Homann-Muller J.W.T., Weening R.S., Ross D. Production of hydrogen peroxide by phagocytizing human granulocytes. J. Lab. Clin. Med. 1975; 85: 198-207.
14. Mauel J., Van Pham T., Kreis B., Bauer J. Stimulation by a bacterial extract (Broncho-Vaxom) of the metabolic and functional activities of murine macrophages. Int. J. Immunopharmacol. 1989;11:637-645.
15. Morgenroth K., Newhouse M.T. Bronchitis. München: PVG, Pharmazeutische Verlagsgesellschaft mbH; 1983. 80-88.
16. Nowak D. Hydrogen peroxide release from human polymorphonuclear leukocytes measured with horseradish peroxidase and odianisidine. Effect of various stimulators and cytochalasin B. Biomed. Biochim. Acta 1990; 49: 353-362.
17. Nowak D., Antczak A., Krol M., Pietras T. et al. Increased content by hydrogen peroxide in expired breath of cigarette smokers. Eur. Respir. J. 1996; 9: 652-657.
18. Nowak D., Piasecka G. Erythrocytes protect a-1-proteinase inhibitor from oxidative inactivation induced by chemicals, myeloperoxidase-H20 2-halide system and stimuled polymorphonuclear leukocytes. Exp. Pathol. 1991; 42: 47-58.
19. Nowak D., Pietras T., Antczak A., et al. Effect of bacterial lipopolysaccharide on the content of lipid peroxidation products in lungs and other organs of mice. Antoniev. Leeuwenhoek. Int. J. Gen. 1993; 63: 77-83.
20. Nowak D., Ruta U., Piasecka G. Ascorbic acid inhibits polymorphonuclear leukocytes influx to the place of inflammation — possible protection of lung from phagocyte-mediated injury. Arch. Immunol. Ther. Exp. 1989; 37: 213-218.
21. Nowak D., Ruta U., Piasecka G. Nicotine increases human polymorphonuclear leukocytes chemotactic response — a possible, additional mechanism of lung injury in cigarette smokers. Exp. Pathol. 1990; 39: 37-43.
22. Nowak D., Slodkowska J., Pietras T., et al. Ascorbic acid enhances the decrease in peroxidase activity in inflammed tissues in mice. Arch. Immunol. Ther. Exp. 1993; 41: 321-326.
23. Pirozynski M., Nowak D., Pirozynska E., et al. Zastosowanie donosowej aerozolowej immunoterapii w przewleklym zapaleniu oskrzeli. Postepy Aerozoloterapii 1994; 2: 117-123.
24. Puigdollers J.M., Rodes Serna G., Hernandez Del Rey I., et al. Stimulation de la production d'immunoglobulines chez I'homme par l'administration orale d'un lysat bacterien. Respiration 1980; 40: 141-149.
25. Repine I.E., Fox R.B., Berger E.M., Harada R.N. Effect of staphylococcal iron contnet on the killing of Staphylococcus aureus by polymorphonuclear leukocytes. Infect, and Immun. 1981; 32: 407-410.
26. Rice W.G., Kinkade J.M., Parmley R.T. High resolution of heterogeneity among human neutrophil granules: physical, biochemical, and ultrastructural properties of isolated fractions. Blood 1986; 68: 541-555.
27. Ruch W., Cooper P.H., Baggiolini M. Assay of H20 2 production by macrophages and neutrophils with homovanillic acid and horse-radish peroxidase. J. Immunol. Meth. 1983; 63: 347-357.
28. Van Zyl J.M., Bassom K, Van Der Val B.J. The oxyferrous adduct of myeloperoxidase (compound III) and its reactivity with chloride. S. Air. J. Sci. 1990; 86: 199-203.
29. Welbourn C.R.B., Goldman G., Paterson I.S., et al. Neutrophil elastase and oxygen radicals: synergism in lung injury after hindlimb ischemia. Am. J. Physiol. 1991; 260: 1852-1856.
30. Winterbourn C.C. Myeloperoxidase as an effective inhibitor of hydroxyl radical production, implications for the oxidative reactions of neutrophils. J. Clin. Unvest. 1986; 78: 545-550.
31. Xinogalos S., Duratsos D., Varonos D. Clinical effectiveness of broncho-vaxom (BV) in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Int. J. Immunother. 1993; 2: 135-142.
Рецензия
Для цитирования:
Nowak D., Prozynski M., Pietras T., StoIarek R., Mazerant P., Leder M. Действие местного иммунокорректора со свойствами вакцины НРС 19 на концентрацию перекиси водорода и активность миелопероксидазы в смывах из полости носа у больных с хроническим бронхитом. Пульмонология. 2001;(1):60-65.
For citation:
Nowak D., Prozynski M., Pietras T., Stolarek R., Mazerant P., Leder M. An influence of the local immune corrector IRS 19 with vaccine properties on hydrogen peroxide concentration and myeloperoxidase activity in nasal washes from chronic bronchitis patients. PULMONOLOGIYA. 2001;(1):60-65. (In Russ.)
Просмотров:
220
Послать статью по эл. почте 